專利名稱：丹酚酸a凍干粉針用于制備保護缺血腦組織損傷藥物的用途的制作方法
技術領域：
本發明涉及一種丹酚酸A凍干粉針用于制備保護缺血腦組織損傷藥物的用途。
背景技術：
腦血管病又稱腦卒中，是由各種病因使供應腦部血液的血管發生病變所致的一種神經系統疾病。其主要病因為腦動脈系統病損(如腦動脈硬化)等原因導致的腦動脈管腔狹窄、血管痙攣、閉塞或破裂、血流減少或完全阻塞，腦部血液循環和功能障礙，腦組織受損而發生的一系列癥狀。主要包括缺血性和出血性腦血管病。其中(ICVD，又稱缺血性卒中)占80 %左右。
·
缺血性腦血管病是指局部腦組織包括神經細胞、膠質細胞及聯系纖維由于供血障礙發生的變性、壞死或一過性的功能喪失。血管內血栓形成、栓塞、血管狹窄導致的腦動脈阻塞是缺血性腦卒中的主要原因。缺血引起腦神經細胞損傷和死亡的作用機制多樣、復雜，缺血性腦卒中(即腦缺血)后，由于腦部缺乏血液和氧氣的供應，導致大腦能量代謝失衡，產生一系列病理性損傷，如氧化應激、興奮性氨基酸毒性、鈣超載、炎癥反應等，從而導致神經元的大量死亡。它是臨床上的常見病、多發病，死亡率及致殘率很高，現已經成為世界公認的三大致死疾病之一。臨床上治療主要是溶栓、挽救缺血區域(半暗帶)的瀕臨死亡的神經元和促進損傷后神經功能的恢復。防治缺血性腦血管疾病是目前人類迫切需要解決的醫學難題。目前美國FDA僅批準了組織纖溶酶原活化因子(tPA)用于中風后的溶栓治療，但其治療時間窗很窄，只有在中風4. 5小時內使用才有效；而且還存在出血以及缺血再灌加重腦損傷的危險性。而目前針對缺血性中風治療的神經保護藥包括鈣通道阻斷劑如尼莫地平、谷氨酸受體拮抗劑如地佐環平(dizocilPine)、抗氧化劑或自由基清除劑如依達拉奉、NO信號傳導通路調節劑蘆貝魯哩(Iubeluzole)以及炎癥抑制劑恩莫單抗(enlimomab)等。但它們中有的治療作用不確切或特異性不強，有的毒副作用較大、耐受性小，有的還處于臨床前或臨床研究階段，很難在防治缺血性腦卒中發揮積極影響。因而，研發出快速有效、安全穩定的防治腦缺血藥物迫在眉睫。在此領域中醫藥發揮了不可忽視的積極作用。丹酚酸A (Salvianolic acid A),又名丹酚酸甲，是唇形科植物丹參Salviamiltiorrhiza Bunge的干燥根及根莖中所含的一種水溶性酹酸類化合物,丹酹酸A對腦微血管栓塞有明顯的藥理作用，而且作用優于丹酚酸B (張恒艾.丹酚酸A對腦微血管栓塞大鼠的影響及機制研究[D].北京北京協和醫學院研究生院，2011〕，丹酚酸A是由丹參素和咖啡酸縮合而成，含有多個酚羥基、羥基、酯鍵等活潑基團，其對光和熱不穩定，暴露空氣易氧化成丹酚酸C和異丹酚酸C等，由于丹酚酸A的上述理化特性，制成丹酚酸A注射齊IJ，其穩定性成為制成注射劑的關鍵技術。但是，有關丹酚酸A制劑特別是注射劑研究文獻資料不多，并且普遍存在注射劑不穩定性的問題，無法保證丹酚酸A藥理作用
發明內容
為克服現有技術存在的上述缺陷，本發明提供了一種丹酚酸A凍干粉針用于制備保護缺血腦組織損傷藥物的用途，其中，所述丹酚酸A凍干粉針的重量配比為丹酚酸A20g 60g，填充劑20g 60g，抗氧劑為制成總量的O. 02 % O. 1% ;所述丹酚酸A凍干粉針的制備方法為(I)提取丹參用水或乙醇溶液提取得到水提取液或醇提取液；(2)轉化將步驟(I)得到的提取液，調pH至3. 5 6. 5，加摩爾百分比為O.1 %
3.O %的催化劑，在100 140°C加熱I 6小時;(3)純化
a.將步驟(2)得到的溶液，調pH至2. 5 4. 5，離心，上清液經非極性或弱極性大孔樹脂柱層析分離，用水洗脫后，用洗脫劑洗脫，高效液相檢測丹酚酸A，收集含有丹酚酸A的洗脫液；b.將步驟a得到的洗脫液用葡聚糖凝膠LH-20或0DS-C18或聚酰胺層析柱分離，用洗脫劑洗脫，高效液相檢測丹酚酸A，收集含有丹酚酸A的洗脫液；C.將步驟b得到的洗脫液調pH至2.0 4.0，經有機溶劑萃取，分離有機溶劑相；d.將步驟c得到的溶液用硅膠層析柱分離，用洗脫劑洗脫，高效液相檢測丹酚酸A，收集含有丹酚酸A的洗脫液；(4)干燥將步驟d得到的洗脫液，減壓回收洗脫劑，再加水溶解，真空干燥、噴霧干燥或微波真空干燥，得所述丹酚酸A ;(5)取所述丹酚酸AlOg 80g加注射用水1500 2800ml攪拌使溶解，用堿調pH值4. O 5. 0，加入所述填充劑使其溶解，再加入所述抗氧劑，攪拌使溶解混勻，再加入活性炭O. 5 2g攪拌吸附，濾過除去活性炭，加注射用水后灌裝成瓶，送入凍干機中進行冷凍干燥；(6)所述冷凍干燥包括如下步驟A、冷凍以20°C 30 V /h速度降溫至-40 V -45 V，保溫冷凍10 16小時；B、升華抽真空至O. 3mbar以下，在10 14小時內將凍結的丹酚酸A制劑溫度上升到-23°C -27°C，維持-23°C -27°C真空干燥6 8小時；C、干燥繼續升溫，以O. 5°C 1. (TC /min均勻升溫至40°C 45°C，維持40°C 45°C干燥2 5小時后，將樣品溫度降至室溫，加蓋，即得丹酚酸A凍干粉針。優選的，還包括保護血腦屏障的用途。優選的，還包括減少缺血腦組織梗死范圍的用途。優選的，還包括減輕缺血腦組織水腫的用途。優選的，其重量配比為丹酚酸A20g 40g，填充劑20g 40g，抗氧劑為制成總量的 O. 03% O. 08%。優選的，其中所述填充劑選自甘露醇、葡萄糖、乳糖中的任意一種或幾種，用量為20mg 40mg/2ml 3ml。優選的，其中所述抗氧劑選自維生素C、硫脲、亞硫酸氫鈉、焦亞硫酸鈉中的任意一種或幾種。優選的，其重量配比為丹酚酸A20g，填充劑甘露醇20g，抗氧劑維生素CO. 8g ;其制備方法為
取所述丹酹酸A20g,加注射用水1900ml攪拌使溶解,用氫氧化鈉鈉調pH值4. O 5. 0，加入甘露醇20g使溶解，再加入O. 8g維生素C，攪拌使溶解混勻，加入活性炭O. 5g攪拌吸附，濾過除去活性炭；加注射用水至2000ml，灌裝成1000瓶，冷凍干燥；所述冷凍干燥包括如下步驟A、冷凍以25°C /h速度降溫至-45°C，保溫冷凍15小時；B、升華抽真空至O. 3mbar以下，在12小時內將凍結的丹酚酸A制劑溫度上升到-25°C，維持-25°C真空干燥8小時；C、干燥繼續升溫，以O. 8°C /min均勻升溫至40°C，維持40°C干燥3小時后，將樣 品溫度降至室溫，加蓋，即得丹酚酸A凍干粉針。優選的，其中步驟(I)中所述的水提取方法為取丹參藥材，切成飲片或粉碎成直徑約2mm顆粒，每次加3 15倍量水提取，共提取I 3次，每次提取I 4小時；提取液減壓濃縮至相對密度1. 10 1. 25 (600C )，加入乙醇使含醇量在30% 80%，離心，上清液減壓回收乙醇并濃縮至無醇味，所述水提取采用煎煮提取或45 95°C水溫浸提取，同時以10 50轉/分速度攪拌，得丹參提取液。優選的，其中步驟(I)中所述的醇提取方法為取丹參藥材，切成飲片或粉碎成直徑約2mm顆粒，每次加3 15倍量30 % 60%乙醇回流提取，每次提取I 4小時，共提取I 3次；減壓回收乙醇，得丹參提取液。優選的，其中步驟(I)中的提取液中丹酚酸B濃度為lmg/ml 30mg/ml或加水稀釋至 lmg/ml 30mg/ml。優選的，其中提取液中丹酹酸B濃度為5mg/ml 20mg/ml或加水稀釋至5mg/ml 20mg/ml。優選的，其中步驟(2)中的催化劑是氯化鐵、三氯化釕、氯化鋁、氯化鋅、氯化鈀中的一種或幾種，催化劑與丹酚酸B的摩爾百分比為O. 1% 3. 0%。優選的，其中催化劑與丹酚酸B的摩爾百分比為O. 5% 2. 0%。優選的，其中步驟a中所述大孔樹脂柱為HPD-80、HPD-100, HPD-100B, HPD-200A、HPD-300、HPD-450、HPD-722、HPD-826、ADS-5、ADS-8、ADS-21、或 D101、AB-8 ;所述洗脫劑為水及不同比例的水與乙醇，并且先用水、10 40%乙醇洗脫，再用20 60%乙醇洗脫，高效液相檢測丹酚酸A，收集含有丹酚酸A部分，洗脫液濃縮至無醇味。優選的，其中步驟b中的所述洗脫劑為水及不同比例的水與乙醇，并且先用水、20 60%乙醇溶液洗脫除雜，再用40 90%乙醇溶液洗脫，高效液相檢測丹酚酸A，收集含有丹酚酸A部分，洗脫液濃縮至無醇味。優選的，其中步驟c中所述的有機溶劑為叔丁基甲基醚、乙酸甲酯、乙酸乙酯、乙酸丁酯或甲酸乙酯。優選的，其中步驟d中所述洗脫劑為石油醚、正戊烷、正庚烷、乙酸乙酯、乙酸甲酯、甲酸乙酯、叔丁基甲基醚組成的兩相溶劑。優選的，其中步驟⑷中所述微波真空干燥的溫度20-100°C，回差溫度1_5°C，真空度-O. 07Mpa以上，微波功率1-100KW，干燥10-200分鐘。優選的，其中步驟⑷中所述真空干燥的溫度50°C 90°C，真空度-O. 07Mpa以上，功率1 60KW，干燥2 20小時。
優選的，其中步驟(4)中所述噴霧干燥的進風口溫度150°C 350°C，出風口溫度70°C 95°C，噴霧速度1 300ml/min。優選的，其中pH調節劑為磷酸、鹽酸、硫酸或醋酸。本發明提供的丹酚酸A凍干粉針主藥是丹酚酸A，本發明通過對丹參的提取、轉化、純化、干燥工藝，得到了丹酚酸A :經過系統的篩選和優化，首先比較確定了起始原料丹酚酸B的提取溶劑和提取方法，由于丹酚酸B水溶性較好，確定了采用水提取或低濃度醇提取，又由于丹酚酸B熱穩定性較差，確定了采用熱水溫浸提取并加攪拌提取方法，或用低濃度乙醇回流提取，使提取溶度低于100°C，保持丹酚酸B不被破壞，通過正交實驗確定了最佳溶劑用量和提取時間，得到了適應工業化生產的丹酚酸B最佳提取工藝的。本發明與現有技術對比表明起始原料用丹參藥材直接提取即可進行投料轉化，不需對丹酚酸B進行純化后再進行轉化，即本發明催化轉化反應中，反應原料丹酚酸B不需要高純度，例如不需要丹酚酸B的純度>50%。一般認為反應原料越純越好，本發明的催化 轉化反應中，丹酚酸B的純度高低對轉化反應效果沒有影響。相反，實驗證明，丹酚酸B純度> 50%時不但產生大量雜質，且沒有提高轉化率。再者，本發明通過反復實驗比較，首先確定了對丹酚酸A產率產生重要影響的因素如轉化前丹酚酸類化合物的濃度、pH值、溫度、時間等。在此基礎上，又通過付出大量的時間、物質和精力反復實驗對溫度、PH值、時間、丹酚酸B的濃度及其他相關條件進行了研究，以及這些因素彼此之間如何協同作用共同對丹酚酸A產率產生影響，從而確定了丹酚酸B轉化丹酚酸A的需要控制的最佳溫度、pH值、時間等，并將丹酹酸B起始濃度控制在lmg/ml 30mg/ml,從而使得本發明丹酹酸A轉化率更加明顯優于其他轉化條件。化學反應中，反應物的純度與濃度常常影響反應的效果。一般情況下對反應物有純度要求，且認為濃度高比濃度低好。然而，本發明的催化轉化反應中，丹酚酸B的濃度高低對轉化反應效果沒有影響。相反，實驗證明，丹酚酸B濃度高不但產生大量雜質，且沒有提高轉化率。而且含丹酚酸B水溶液中丹酚酸B的濃度并非越高越好，30mg/ml以上濃度轉化率反而低，效果更差。因此，本發明的生產工藝在節約成本和生產周期方面，具有預料不到的技術效果。在現有技術沒有給出任何技術啟示的情況下，本領域技術人員如果僅從理論上推斷，是不可能得出在上述各條件參數下將丹酸B轉化成丹酚酸A具有更好的轉化效果的結論。更為重要的是，本發明通過創造性的勞動，發現氯化鐵、三氯化釕、氯化鋁、氯化鋅或氯化鈀作為催化劑能顯著提高丹酚酸B轉化丹酚酸A的轉化率，轉化率非常穩定的能達到接近60 %，多數情況都可以超過60 %，這在以往任何一項現有技術中都是不可能的，因此，取得了預料不到的技術效果。由于丹酚酸A含量較低，經轉化后丹酚酸A含量大提高，但還含大量雜質，因此，分別選擇了弱極性和非極性大孔吸附樹脂進行粗分離，再選擇聚酰胺等、溶劑萃取、硅膠分離，并對不同流份進行測定，去除雜質部分后，將丹酚酸A含量從10%左右提高到80%，至90%，至 93%，至 96%。進一步，在顯著提高轉化率的同時，本發明通過適于實際產業應用的純化步驟，尤其是通過一系列的分離、洗脫處理等步驟后，沒有采用傳統的常壓干燥，而是采用真空干燥、噴霧干燥、微波真空干燥，從而徹底克服了以往干燥溫度過高，干燥時間過長及對丹酚酸A的破壞大的缺陷；而冷凍干燥時間過長，成本極高且冷凍干燥所得的提取物無法完全去除溶劑殘留問題。本發明還可以將低純度與高純度的丹酚酸B直接混合，只需配成合適的起始轉化濃度，同樣可以達到轉化成丹酚酸A的目的，這種轉化原料的制備工藝非常簡單，生產成本降低的同時非常適于實際產業中的應用。本發明提供的丹酚酸A凍干粉針，根據丹酚酸A的化學與物理特性，從影響藥物穩定的附加劑，劑型、容器、外界 如空氣、光線、水分，雜質等產生化學反應反而導致藥劑的分解進行創造性的實驗分析。通過篩選制劑處方，反復試驗，選擇了甘露醇、葡萄糖、乳糖等，制成凍干粉針，粉針成型良好，塊狀物疏松，孔隙、色澤均勻，并且穩定性非常高，解決了由于空氣、光線、水分，雜質等產生化學反應導致的藥物分解。將丹酚酸A制成合適的制劑，解決了丹酚酸A制成注射劑穩定性問題，通過選擇合適的輔料與劑型，保證了丹酚酸A藥理作用，為臨床提供安全、有效的丹酚酸A注射制劑。基于上述原因，我們根據丹酚酸A的理化特性，通過選擇合適的劑型，篩選了不同的輔料，優選了不同的制備工藝及工藝參數，制備出了穩定、安全、有效、質量可控的丹酚酸A凍干粉針。本發明中的丹酚酸A通過堿液將pH值調整到適合范圍，再通過加入甘露醇等，使其更易于冷凍干燥，并且不影響藥性。本發明與現有技術對比表明本發明通過創造性的勞動，最終確定了凍干速度降溫速度及冷凍時間，升華時升溫速度與溫度，確定真空升華時間，明確了干燥升溫速度和溫度，及干燥時間；創造性的明確定了冷凍降溫速度與溫度、升華升溫速度與溫度干燥升溫速度與溫度及時間之間的復雜關系，以及適宜的數值范圍的確定等，從而才最終獲得了穩定的凍干粉針劑。更為重要的是，采用本發明制備方法制成的丹酚酸A凍干粉針完全可以不改變丹酚酸A原有的化學屬性；制成的丹酚酸A凍干粉針組合物與丹酚酸A相比具有水溶性好、熱穩定性高、復溶性好等特點。另一方面，本發明還提供了其用于預防和或治療缺血性腦血管病方面的用途。經過實驗數據對比可知，易卒中型腎血管性高血壓大鼠大腦中動脈阻塞(MCAO)術后麻醉蘇醒評分，模型組蘇醒后(12h內)的神經行為評分(自發活動、四肢運動的對稱性、前肢伸展爬行動作的對稱性、爬籠壁、推軀干反應、觸須對刺激的反應等)顯著低于假手術組，說明腦血栓缺血后易卒中型腎血管性高血壓大鼠(RHRSP)神經功能受損嚴重，且在持續的72h內，神經行為評分持續明顯低于假手術組；尼莫地平組以及丹酚酸A凍干粉針各劑量組與模型組相比，大鼠蘇醒后的神經行為有不同程度的升高，以尼莫地平組以及丹酚酸A凍干粉針中、高劑量組最為明顯，且其缺血后24h的神經行為已基本接近假手術組水平；至缺血后72h丹酚酸A凍干粉針各劑量組大鼠神經行為已恢復正常，提示丹酚酸A凍干粉針能提高RHRSP腦血栓缺血后神經行為，具有保護及改善腦缺血后神經癥狀的作用。經過腦組織病理檢查實驗數據對比可知，假手術組腦組織雙側對稱，未見病變，模型組血管內血栓附著嚴重。與模型組比較，鏡下觀察丹酚酸A凍干粉針各劑量組大鼠缺血側大腦中動脈(MCA)局部血栓的長度縮短，在動脈壁附著面積減小，以高、中劑量組最為明顯。TTC染色可見梗死腦組織呈白色，丹酚酸A凍干粉針各劑量組中被染成白色的腦組織范圍比模型對照組顯著縮小。HE染色可見模型組缺血側皮層MCA供血區(以額頂皮質為中心)梗死灶內有明顯的腦組織軟化，細胞壞死，局部壞死組織脫落等現象，丹酚酸A凍干粉針高劑量組大鼠此處未見組織萎縮脫落現象；丹酚酸A凍干粉針各劑量組和模型對照組的HE染色顯示灶內、灶周均有小血管增生，但是丹酚酸A凍干粉針各劑量組與模型組比較增生的小血管數目顯著增多；另外，HE染色顯示模型對照組可見大小不等的灶狀出血，丹酚酸A凍干粉針高、中劑量組并無發現有灶狀出血現象。結果顯示丹酚酸A凍干粉針能明顯改善RHRSP腦血栓缺血后腦組織病理狀態，降低血栓附著面積、減少梗死面積，增加梗死區內及周圍腦組織的小血管數、減少腦出血現象、從而保護腦組織壞死脫落，具有保護腦血栓缺血致腦組織損傷的作用。經過實驗數據對比可知，腦血栓后腦組織血腦屏障破壞，通透性增加，伊文思藍(EB)結合白蛋白可通過開放的血腦屏障(BBB)進入腦組織。丹酚酸A凍干粉針給藥后，各劑量組大鼠腦組織顯微鏡下EB光斑數以及腦組織EB檢出含量明顯減少，與模型組比較均有顯著差異，說明丹酚酸A凍干粉針對腦組織損傷致血腦屏障通透性增加具有抑制作用，能保護血腦屏障，而保護腦組織進一步受損傷。。
經過實驗數據對比可知，通過對RHRSP腦血栓大鼠模型組比較，假手術組未見梗死腦組織；丹酚酸A凍干粉針各劑量組腦組織梗死體積及腦含水量明顯小于模型對照組，且劑量越大，梗死體積越小，腦含水量越少。丹酚酸A凍干粉針低、中、高劑量組梗死體積及腦含水量均低于尼莫地平組。說明丹酚酸A凍干粉針可加速病灶的修復，減小RHRSP腦血栓后缺血腦組織梗死范圍，減輕腦組織水腫，具有修復和保護缺血后腦組織損傷的作用。經過實驗數據對比可知，與RHRSP腦血栓缺血模型組比較，缺血治療后，丹酚酸A凍干粉針各劑量組腦組織缺血半暗帶區MVD和血管場面積不同程度地顯著增高，且停藥后48h內數值比較穩定。表明丹酚酸A凍干粉針能增加腦組織缺血半暗帶的MVD和血管場面積比，表明丹酚酸A凍干粉針有促進缺血腦組織微血管新生和側枝循環建立的作用。經過實驗數據對比可知，RHRSP腦血栓缺血模型組血管內皮生長因子信使核糖核酸(VEGFmRNA)表達水平較假手術組有明顯升高，說明腦組織缺血缺氧后能刺激腦組織內VEGF的表達增加，提示腦梗死后機體自身會出現一種對抗缺血性損傷的保護性反應，使VEGF的表達增加，在缺血后出現自身“代償性血管再生”。丹酚酸A凍干粉針各劑量組與模型組組比較，VEGFmRNA表達水平顯著升高，表明丹酚酸A凍干粉針能顯著促進缺血腦組織血管新生，促進側枝循環代償的建立，挽救缺血半暗帶，保護缺血導致的腦組織損傷，且存在一定的量效關系。經過實驗數據對比可知，RHRSP腦血栓缺血模型組大鼠腦組織堿性成纖維細胞生長因子(bFGF)蛋白表達較假手術組有明顯升高，但隨缺血時間的延長，有下降的趨勢，提示腦組織缺血缺氧后，機體自身產生短暫的保護應激反應，可刺激腦組織bFGF蛋白表達增力口。丹酚酸A凍干粉針各劑量組與模型組比較，各時間段的bFGF蛋白表達顯著增高；各劑量組自身各時間段比較顯示，bFGF蛋白表達持續穩定；提示丹酚酸A凍干粉針能增加缺血腦組織bFGF蛋白表達，具有很好的神經細胞保護作用和促進血管生成的作用，有助于側枝循環的建立，挽救缺血半暗帶。經過實驗數據對比可知，丹酚酸A凍干粉針能減輕腦缺血再灌注損傷大鼠神經功能缺損癥狀，有利于其神經行為的恢復，丹酚酸A凍干粉針具有改善腦組織損傷后神經功能的作用。
經過實驗數據對比可知，丹酚酸A凍干粉針各劑量組與缺血再灌注損傷模型組相比腦梗死體積比顯著減少，腦指數以及腦含水量均明顯減少，表明丹酚酸A凍干粉針能減少腦缺血再灌注大鼠腦組織梗塞范圍，能減輕腦缺血再灌注損傷后的腦組織水腫程度。經過實驗數據對比可知，局灶性腦缺血大鼠，給予不同劑量丹酚酸AlOmin始，各藥物組較自身給藥前缺血半暗帶局部腦血流量(rCBF)有明顯上升，且以丹酚酸A凍干粉針高、中劑量組尤為顯著；丹酚酸A凍干粉針各劑量組相比，有良好的量效關系；丹酚酸A凍干粉針中劑量組各時段的rCBF與尼莫地平組相當。由此可知，丹酚酸A凍干粉針有增加腦缺血大鼠腦組織缺血半暗帶rCBF的作用，有利于挽救缺血半暗帶瀕臨死亡的腦組織，發揮治療腦缺血的作用。經過實驗數據對比可知，在大鼠持續腦缺血2h恢復再灌后，各組大鼠缺血半暗帶rCBF均有不同程度的增加。再灌后，尼莫地平、丹酚酸A凍干粉針高、中、低劑量組大鼠rCBF明顯增高，各時間段rCBF與模型組相比都有極顯著差異。再灌后lh，尼莫地平和丹酚酸A凍干粉針高劑量組rCBF恢復至接近原rCBF的75%、丹酹酸A凍干粉針中劑量組恢復至約為原rCBF的69%、丹酚酸A凍干粉針低劑量組恢復至約為原rCBF的61 %，且至再灌注3h·內，各藥物組rCBF都維持在相對穩定的范圍內。結果表明丹酚酸A凍干粉針能明顯改善大鼠缺血再灌注后缺血半暗帶腦組織的腦血流量，恢復腦細胞血供，從而挽救缺血半暗帶，防止腦組織進一步損傷甚至死亡，對缺血性腦血管病有很好的治療作用。經過實驗數據對比可知，丹酚酸A凍干粉針能升高缺血腦組織三磷酸腺苷(ATP)、二磷酸腺苷(ADP)、(單磷酸腺苷)AMP、磷酸肌酸(PC)的含量，降低腦組織乳酸(LA)含量，能顯著改善大鼠腦缺血以及缺血再灌注的能量代謝。丹酚酸A凍干粉針可通過改善缺血后腦組織的能量代謝，增加腦組織能量物質的供應，增強腦細胞的生存能力，挽救腦缺血后的缺血半暗帶瀕臨死亡的腦細胞，防止腦組織進一步損傷甚至死亡，可很好地用于治療缺血性腦血管病。經過實驗數據對比可知，大鼠腦缺血2h再灌24h后，神經細胞凋亡嚴重；而尼莫地平和不同劑量丹酚酸A凍干粉針干預后，與模型組比較，大鼠腦組織內神經細胞凋亡顯著減少(P < O. 001或P < O. 01);表明丹酚酸A凍干粉針具有抑制腦缺血損傷大鼠腦組織神經元死亡、抑制神經細胞凋亡的作用。神經營養因子是神經元生長與存活必需的一組蛋白質分子，對神經元生長、發育以及功能的完整性起支持作用。神經生長因子(NGF)、腦源性神經營養因子(BDNF)、神經營養因子-3(NT-3)是神經營養因子家族的一部分，可以維持神經元存活和促進神經細胞分化和誘導軸突生長；能保護神經元、促進神經元修復以及抑制遲發性神經元死亡，從而對抗腦缺血、保護腦缺血損傷。缺血再灌后，大鼠腦組織內較假手術組有所增高，提示腦缺血再灌損傷后，腦組織內NGF、BDNF表達應激保護性增加；但缺血后腦組織內NT-3含量明顯減少。經過實驗數據對比可知，與模型對照組比較，丹酚酸A凍干粉針各劑量組NGF、BDNF、NT-3蛋白表達均明顯增強，提示丹酚酸A凍干粉針能增強缺血損傷腦組織內源性神經營養因子NGF、BDNF, NT-3的表達，達到神經元保護的作用。缺血再灌注后，腦組織內炎癥細胞因子白細胞介素-1 β (IL-Ιβ)、白細胞介素-6 (IL-6)、白細胞介素_8 (IL-8)、腫瘤壞死因子-a (TNF- α )、細胞間粘附分子-1 (ICAM-1)含量均極顯著增加；經過實驗數據對比可知，給予丹酚酸A凍干粉針各劑量組的大鼠腦組織各炎癥細胞因子含量較模型組明顯降低。提示丹酚酸A凍干粉針可以抑制缺血損傷腦組織炎癥細胞因子的表達，抑制腦組織炎癥反應的發生，抑制炎性反應介導的神經元及腦組織級聯損傷。·
經過實驗數據對比可知，腦缺血再灌注模型組與假手術組比較腦組織Ca2+含量極顯著增高，K+、Mg2+含量顯著降低；與模型組比較，尼莫地平組和丹酚酸A凍干粉針各劑量組能顯著降低腦組織中Ca2+含量、升高K+、Mg2+含量，說明丹酚酸A凍干粉針能抑制Ca2+內流減輕鈣超載，從而可抑制Ca2+超載誘導的神經元細胞凋亡。經過實驗數據對比可知，丹酚酸A凍干粉針能明顯提高腦缺血再灌注損傷大鼠的大腦皮層和紋狀體單胺類遞質5-羥色胺(5-HT)、去甲腎上腺素(NE)、多巴胺(DA)的含量，升高大鼠腦缺血再灌注損傷腦組織中Y-氨基丁酸(GABA)、牛磺酸(Tau)含量、顯著降低腦組織中谷氨酸(Glu)、天門冬氨酸(Asp)、甘氨酸(Gly)的含量以及氨基酸興奮毒性指數。且劑量增加，作用增強。結合腦組織病理病理學檢查顯示的丹酚酸A凍干粉針能明顯減輕腦水腫，改善神經元細胞形態的結果，表明丹酚酸A凍干粉針能抑制單胺類神經遞質過度釋放，改善單胺類神經遞質紊亂；抑制腦缺血再灌注中興奮性氨基酸的堆積，穩定興奮性氨基酸-抑制性氨基酸遞質的平衡，減輕興奮性氨基酸毒性；從而抑制單胺類神經遞質紊亂和興奮性氨基酸毒性誘導的神經元細胞凋亡。經過實驗數據對比可知，丹酚酸A凍干粉針各劑量組與缺血再灌注模型組相比，大鼠腦組織中脂質過氧化物(LPO)含量顯著降低，超氧化物歧化酶(SOD)以及谷胱甘肽過氧化物酶(GSH-Px)活性顯著升高；說明丹酚酸A凍干粉針能增加缺血再灌注損傷腦組織中過氧化物清除酶的活性、抑制過氧化物的產生，從而對抗氧自由基對神經元細胞和腦組織的損傷。經過實驗數據對比可知，腦血栓缺血模型組各時間段的腦血管內皮細胞凋亡數目顯著高于假手術組，腦組織缺血后6h，內皮細胞凋亡就已明顯增多，至缺血后24小時達高峰。與模型組比較，丹酚酸A凍干粉針各劑量組的各時間段的細胞凋亡數顯著減少，說明丹酚酸A凍干粉針能抑制腦缺血后腦血管內皮細胞凋亡，提高腦血管內皮細胞存活率，從而保證腦血管內皮細胞功能的正常，維持缺血損傷后腦血管結構和功能的完整而增強對抗腦缺血損傷的能力，發揮治療缺血性腦血管病作用。經過實驗數據對比可知，經丹酚酸A凍干粉針和尼莫地平作用后，缺氧及缺氧-復氧損傷大鼠腦微血管內皮細胞存活率顯著升高，且丹酚酸A凍干粉針組存活率顯著高于尼莫地平組。提示丹酚酸A凍干粉針能保護腦微血管內皮細胞缺氧及缺氧-復氧損傷，增強其耐缺氧能力，提高缺氧損傷以及缺氧-復氧損傷的腦微血管內皮細胞存活率。經過實驗數據對比可知，缺氧-復氧損傷，能造成大鼠腦微血管內皮細胞各期凋亡率顯著增加。與模型組比較，丹酚酸A凍干粉針各劑量組及尼莫地平組均可顯著減低細胞早、晚期及總凋亡率，且呈一定的量效關系。且丹酚酸A凍干粉針Ιθμπιο /L劑量組與尼莫地平40 μ mol/L劑量組效果相當。提示丹酚酸A凍干粉針具有良好的抗缺氧_復氧損傷導致的大鼠腦微血管內皮細胞凋亡的作用。丹酚酸A凍干粉針各劑量組和尼莫地平組作用后，缺氧-復氧損傷的大鼠腦微血管內皮細胞分泌組織纖維酶原激活物(t-PA)和一氧化氮(NO)的分泌量較模型組顯著升高(P < O. 01或P < O. 001)，其中丹酚酸A凍干粉針中、高劑量組升至接近正常對照組水平；各給藥組t-PA/PAI和NO/ΕΤ比值也較模型組顯著提高。提示丹酚酸A凍干粉針能改善缺氧-復氧損傷后腦微血管內皮細胞的分泌功能。缺氧-復氧損傷后，BMVEC胞內Ca2+濃度顯著增高。經過實驗數據對比可知，與模型組比較，各藥物組Ca2+濃度極顯著降低，以丹酚酸A凍干粉針中、高劑量組效果最為顯著，且細胞內鈣離子濃度顯著低于尼莫地平40 μ mol/L劑量組。提示丹酚酸A凍干粉針具有抑制缺氧-復氧損傷致BMVEC胞內Ca2+濃度的作用。經過實驗數據對比可知，丹酚酸A凍干粉針對大鼠動脈血栓形成時間的影響與生理鹽水對照組比較，丹酚酸A凍干粉針高、中、低劑量組的血栓形成時間顯著延長；低劑量組(O. 5mg/kg)血栓形成時間與20mg/kg阿司匹林組相當；表明丹酚酸A凍干粉針能延長血栓形成時間，預防動脈血栓的形成，預防血栓而致的缺血性腦血管病。
經過實驗數據對比可知，丹酚酸A凍干粉針對大鼠血栓形成的影響與生理鹽水組比較，丹酚酸A凍干粉針高、中、低劑量組大鼠血栓濕、干重均顯著減輕。且低劑量組與20mg/kg阿司匹林組效果相當。說明丹酚酸A凍干粉針具有很好的抑制血栓形成的作用，能用于預防或治療血栓所致的缺血性腦血管病。經過實驗數據對比可知，丹酚酸A凍干粉針對大鼠靜脈栓塞的影響與生理鹽水組比較，丹酚酸A凍干粉針高、中、低劑量組大鼠靜脈血栓濕、干重顯著減輕，低劑量組(O. 5mg/kg)與20mg/kg阿司匹林組效果相當(P > O. 05);表明丹酚酸A凍干粉針有抑制靜脈血栓形成的作用，可用于預防急性缺血性腦血管病發生后的靜脈血栓栓塞。經過實驗數據對比可知，丹酚酸A凍干粉針對大鼠體外血栓形成與生理鹽水組比較，丹酚酸A凍干粉針高、中、低劑量組大鼠體外血栓形成的長度顯著縮短，血栓濕、干重顯著減輕，低劑量組(O. 5mg/kg)與20mg/kg阿司匹林組效果相當；表明丹酹酸A凍干粉針對體外血栓形成具有較好的抑制作用。經過實驗數據對比可知，丹酚酸A凍干粉針對體內已形成的血栓的溶栓與生理鹽水組比較，生理鹽水組均持續栓塞，且無出現再通現象；各藥物組持續栓塞的動物數少，與生理鹽水組相比均有極顯著差異；丹酚酸A凍干粉針中劑量組，其血管開放程度與2000U/kg尿激酶組相似，其再通率相當；丹酚酸A凍干粉針高劑量組持續再通率以及再通率均高于尿激酶組，且再栓率明顯低于尿激酶組；丹酚酸A凍干粉針低劑量組再通率雖低于尿激酶組，但其再栓率與尿激酶組相當，且有低于尿激酶再栓率的趨勢。說明丹酚酸A凍干粉針有較好的溶栓以及防止溶栓后再栓塞的作用。腦血栓后，大鼠全血粘度、血漿粘度顯著增高，紅細胞壓積也顯著升高，經過實驗數據對比可知，丹酚酸A凍干粉針各劑量組與模型組比較，其全血粘度和血漿粘度以及紅細胞壓積均明顯降低；提示丹酚酸A凍干粉針能加快微血流流速，降低血液粘度，改善血液流變學而有效對抗腦血栓的作用。綜上所述，本發明的丹酚酸A凍干粉針對缺血性腦血管病具有明顯的治療效果，本發明中所述缺血性腦血管病包括各種病因形成的影響腦循環的病變及其導致的以神經元死亡和神經功能的缺損為主的缺血性腦組織損害。主要包括一下的任何一種或幾種(I)腦血栓由來自心臟的栓子如人工瓣膜、房顫、心室血栓、擴張性心肌病、動/靜脈血管炎等形成栓子隨血液流入腦部血管，導致構成整個腦部血循環的前循環和后循環的各級血管的任何一部位和/或多部位血栓。(2)腦缺血再灌注損傷(3)腦栓塞。(4)顱外頸動脈和腦基底動脈的粥樣硬化或狹窄(5)腔隙性腦梗塞。(6)短暫性腦缺血性發作(7)血管性癡呆。醫學和藥學研究人員無法預先在不做相關實驗的前提下，預先得知丹酚酸A凍干粉針具有上述的良好用途。


圖1.丹酚酸B對照品高效液相色譜圖；圖2.丹參提取液中丹酚酸B高效液相色譜圖；圖3.丹酚酸A對照品高效液相色譜圖；圖4.丹酚酸B催化轉化液中丹酚酸A高效液相色譜圖。圖5.丹酚酸A凍干粉針凍干曲線圖。 圖6.丹酚酸A凍干粉針真空曲線圖。
具體實施例方式實施例1取丹參藥材，粉碎成6目顆粒，每次加7倍量92°C水，溫浸提取3次，同時以25轉/分速度攪拌，每次溫浸提取3小時；提取液減壓濃縮至相對密度1. 20 (600C )，加入乙醇使含醇量在70%，靜置，濾過，濾液減壓回收乙醇并濃縮至無醇味；加水稀釋至每Iml含丹酚酸B20mg，水溶液用10%氫氧化鈉調pH至4. 0，加入O. 5% ZnCl2作為催化劑，120°C溫度加熱轉化4小時，轉化液用20%磷酸調pH值至2. 5，離心，上清液減壓濃縮至每Iml含丹酚酸A3mg，經HPD-100大孔樹脂柱層析分離，丹酚酸A上樣量與大孔吸附樹脂比為1: 50，樹脂柱徑高比為1: 10，分別用3倍柱體積水、5倍柱體積25%乙醇洗脫，除去雜質，再用4倍柱體積40%乙醇洗脫，HPLC檢測，收集含有丹酚酸A的40%乙醇洗脫部分，減壓回收乙醇并濃縮至無醇味；水溶液濃縮至每ml含5mg丹酚酸A的溶液，通過聚酰胺層析柱分離，丹酚酸A上樣量與聚酰胺比為1: 10，樹脂柱徑高比為1: 8，分別用3倍柱體積水、12倍柱體積40%乙醇溶液洗脫除雜，再用8倍柱體積60%乙醇溶液洗脫，收集含有丹酚酸A的60%乙醇溶液部分，減壓回收乙醇并濃縮至每Iml含丹酚酸A15mg水溶液；水溶液用20%磷酸調PH至2. 5，用水溶液3倍量的叔丁基甲基醚，分3次萃取，分離有機層，減壓回收叔丁基甲基醚，制成每Iml含丹酚酸AO. 5g的萃取液，加入I 3倍量硅膠，攪拌，揮干；把攪拌樣硅膠加到已裝好的15倍量干硅膠柱上，硅膠柱徑高比為1: 10，以正戊烷-叔丁基甲基醚為洗脫劑，梯度洗脫，分別用正戊烷叔丁基甲基醚(4 6)洗脫10倍柱體積，正戊烷叔丁基甲基醚(6 4)洗脫10倍柱體積，減壓回收洗脫劑，回收有機溶劑后的丹酚酸A加12倍量水溶解，用微波真空干燥(微波真空干燥溫度60°C，回差溫度3°C，真空度-O. 07Mpa以上，微波功率20KW) 100分鐘，得丹酚酸A。實施例2取丹參藥材，切成飲片，每次加8倍量90°C水溫浸提取3次，同時以20轉/分速度攪拌，每次溫浸提取2. 5小時；提取液減壓濃縮至相對密度1. 15 (600C )，加入乙醇使含醇量在75%，靜置，濾過，濾液減壓回收乙醇并濃縮至無醇味；加水稀釋至每Iml含丹酚酸B15mg，水溶液用10%氫氧化鉀調pH至4. 0，加入O. 6% FeCl3作為催化劑，在120°C溫度加熱轉化3. 5小時，轉化液用15%鹽酸調pH值至2. 5，離心，上清液減壓濃縮至每Iml含丹酚酸A5mg，經HPD-1OO大孔樹脂柱層析分離，丹酚酸A上樣量與大孔吸附樹脂比為1: 45，樹脂柱徑高比為1:8，分別用3. 5倍柱體積水、4倍柱體積25%乙醇洗脫，除去雜質，再用5倍柱體積45%乙醇洗脫，HPLC檢測，收集含有丹酚酸A的45%乙醇洗脫部分，減壓回收乙醇并濃縮至無醇味；水溶液濃縮至每ml含5mg丹酚酸A的溶液，通過聚酰胺層析柱分離，丹酚酸A上樣量與聚酰胺比為1: 9，樹脂柱徑高比為1: 7，分別用4倍柱體積水、10倍柱體積40%乙醇溶液洗脫除雜，再用8倍柱體積65%乙醇溶液洗脫，收集含有丹酚酸A的65%乙醇溶液部分，減壓回收乙醇并濃縮至每Iml含丹酚酸A12mg水溶液；水溶液用15%鹽酸調pH至2. 6，用4倍量的叔丁基甲基醚，分4次萃取，分離有機層，減壓回收叔丁基甲基醚，制成每Iml含丹酚酸AO. 8g的萃取液，加入2 3倍量硅膠，攪拌，揮干；把攪拌樣硅膠加到已裝好的13倍量干硅膠柱上，硅膠柱徑高比為1: 8，以正庚烷-乙酸乙酯為洗脫劑，梯度洗脫，分別用正庚烷-乙酸乙酯(4 6)洗脫8倍柱體積，正庚烷-乙酸乙酯(7 3)洗脫8倍柱體積，減壓回收洗脫劑，再加8倍量水溶解，真空干燥(干燥溫度65°C，真空度-O. 07Mpa以上，功率10KW)3小時，得丹酚酸A。 實施例3取丹參藥材，粉碎成直徑約2mm顆粒，每次加9倍量85°C水溫浸提取2次，同時以30轉/分速度攪拌，每次溫浸提取3. 5小時；提取液減壓濃縮至相對密度1. 10 (600C )，加入乙醇使含醇量在75%，靜置，濾過，濾液減壓回收乙醇并濃縮至無醇味；加水稀釋至每Iml含丹酚酸B18mg，水溶液用10 %碳酸鈉調pH至5. 2，加入O. 6% AlCl3作為催化劑，在123°C溫度加熱轉化4. 5小時，轉化液用15 %硝酸調pH值至2. 8，離心，上清液減壓濃縮至每Iml含丹酚酸A6mg，經HPD-100B大孔樹脂柱層析分離，丹酚酸A上樣量與大孔吸附樹脂比為1: 40，樹脂柱徑高比為1: 7，分別用4倍柱體積水、4倍柱體積25%乙醇洗脫，除去雜質，再用5倍柱體積40%乙醇洗脫，HPLC檢測，收集含有丹酚酸A的40%乙醇洗脫部分，減壓回收乙醇并濃縮至無醇味；水溶液濃縮至每ml含6mg丹酚酸A的溶液，通過聚酰胺層析柱分離，丹酚酸A上樣量與聚酰胺比為1: 8，樹脂柱徑高比為1: 8，分別用4倍柱體積水、9倍柱體積40%乙醇溶液洗脫除雜，再用7倍柱體積65%乙醇溶液洗脫，收集含有丹酚酸A的65%乙醇溶液部分，減壓回收乙醇并濃縮至每Iml含丹酚酸AlOmg水溶液；水溶液用15%硝酸調pH至2. 6，用4倍量的乙酸甲酯，分4次萃取，分離有機層，減壓回收乙酸甲酯，制成每Iml含丹酚酸AO. 7g的萃取液，加入3倍量硅膠，攪拌，揮干；把攪拌樣硅膠加到已裝好的10倍量干硅膠柱上，硅膠柱徑高比為1: 7，以石油醚、甲酸乙酯為洗脫劑，梯度洗脫，分別用石油醚-甲酸乙酯(4 6)洗脫8倍柱體積，石油醚-甲酸乙酯(6 4)洗脫9倍柱體積，減壓回收洗脫劑，再加8倍量水溶解，噴霧干燥(進風口溫度170°C，出風口溫度85°C，噴霧速度150ml/min)，得丹酚酸A實施例4取丹參藥材，切成飲片，每次加IO倍量80°C水溫浸提取3次，同時以15轉/分速度攪拌，每次溫浸提取3小時；提取液減壓濃縮至相對密度1. 18(60°C)，加入乙醇使含醇量在70%，靜置，濾過，濾液減壓回收乙醇并濃縮至無醇味；加水稀釋至每Iml含丹酚酸B20mg，水溶液用10%碳酸氫鈉調pH至5. 4，加入O. 8% RuCl3作為催化劑，在128°C溫度加熱轉化
4.O小時，轉化液用20%硫酸調pH值至2. 6，離心，上清液減壓濃縮至每Iml含丹酚酸A5mg，經HPD-826大孔樹脂柱層析分離，丹酚酸A上樣量與大孔吸附樹脂比為1: 40，樹脂柱徑高比為1: 7，分別用4倍柱體積水、4倍柱體積25%乙醇洗脫，除去雜質，再用5倍柱體積40%乙醇洗脫，HPLC檢測，收集含有丹酚酸A的40%乙醇洗脫部分，減壓回收乙醇并濃縮至無醇味；水溶液濃縮至每ml含6mg丹酚酸A的溶液，通過ODS層析柱分離，丹酚酸A上樣量與ODS比為1: 10，樹脂柱徑高比為1: 15，分別用4倍柱體積水、7倍柱體積35%乙醇溶液洗脫除雜，再用6倍柱體積60%乙醇溶液洗脫，收集含有丹酚酸A的60%乙醇溶液部分，減壓回收乙醇并濃縮至每Iml含丹酚酸A12mg水溶液；水溶液用20%硫酸調pH至2. 8，用4倍量的乙酸丁酯，分4次萃取，分離有機層，減壓回收乙酸丁酯，制成每Iml含丹酚酸AO. 5g的萃取液，加入2. 5倍量硅膠，攪拌，揮干；把攪拌樣硅膠加到已裝好的9倍量干硅膠柱上，硅膠柱徑高比為1: 8，以正戊烷、乙酸甲酯為洗脫劑，梯度洗脫，分別用正戊烷-乙酸甲酯(4.5 5.5)洗脫8倍柱體積，正戊烷-乙酸甲酯(6.5 3. 5)洗脫8倍柱體積，減壓回收洗脫劑，再加10倍量水溶解，用微波真空干燥(微波真空干燥溫度55°C，回差溫度2°C，真空度-O. 07Mpa以上，微波功率30KW) 120分鐘，得丹酚酸A。
實施例5取丹參藥材，粉碎成直徑約2mm顆粒，每次加9倍量85°C水溫浸提取3次，同時以20轉/分速度攪拌，每次溫浸提取2. 5小時；提取液減壓濃縮至相對密度1. 22 (600C )，加入乙醇使含醇量在70%，靜置，濾過，濾液減壓回收乙醇并濃縮至無醇味；加水稀釋至每Iml含丹酚酸BlOmg，水溶液用20%檸檬酸鈉調pH至3. 5，加入O. 4% PdCl3作為催化劑，在132°C溫度加熱轉化3. 5小時，轉化液用20%醋酸調pH值至2. 6，離心，上清液減壓濃縮至每Iml含丹酚酸A5mg，經HPD-826大孔樹脂柱層析分離，丹酚酸A上樣量與大孔吸附樹脂比為1: 35，樹脂柱徑高比為1: 8，分別用3倍柱體積水、4. 5倍柱體積25%乙醇洗脫，除去雜質，再用6倍柱體積40%乙醇洗脫，HPLC檢測，收集含有丹酚酸A的40%乙醇洗脫部分，減壓回收乙醇并濃縮至無醇味；水溶液濃縮至每ml含8mg丹酚酸A的溶液，通過ODS層析柱分離，丹酚酸A上樣量與ODS比為1: 12，樹脂柱徑高比為1: 18，分別用4倍柱體積水、8倍柱體積30%乙醇溶液洗脫除雜，再用5倍柱體積65%乙醇溶液洗脫，收集含有丹酚酸A的65%乙醇溶液部分，減壓回收乙醇并濃縮至每Iml含丹酚酸A15mg水溶液；水溶液用20%醋酸調pH至2. 7，用5倍量的乙酸乙酯，分5次萃取，分離有機層，減壓回收乙酸乙酯，制成每Iml含丹酚酸AO. 5g的萃取液，加入2倍量硅膠，攪拌，揮干；把攪拌樣硅膠加到已裝好的10倍量干硅膠柱上，硅膠柱徑高比為1: 10，以正戊烷、乙酸甲酯為洗脫劑，梯度洗脫，分別用正戊烷-乙酸甲酯(4.5 5.5)洗脫8倍柱體積，正戊烷-乙酸甲酯(6.5 3.5)洗脫8倍柱體積，減壓回收洗脫劑，再加12倍量水溶解，用微波真空干燥(微波真空干燥溫度65°C，回差溫度1°C，真空度-O. 07Mpa以上，微波功率30KW) 90分鐘，得丹酚酸A。實施例6取丹參藥材，粉碎成直徑約2mm顆粒，每次加9倍量88°C水溫浸提取3次，同時以22轉/分速度攪拌，每次溫浸提取3. 5小時；提取液減壓濃縮至相對密度1. 16 (600C )，加入乙醇使含醇量在75%，靜置，濾過，濾液減壓回收乙醇并濃縮至無醇味；加水稀釋至每Iml含丹酚酸B13mg，水溶液用10 %氫氧化鈉調pH至3. 6，加入O. 5% CuCl2作為催化劑，在133°C溫度加熱轉化4. 5小時，轉化液用10%鹽酸調pH值至2. 7，離心，上清液減壓濃縮至每Iml含丹酚酸A5mg，經HPD-DlOl大孔樹脂柱層析分離，丹酚酸A上樣量與大孔吸附樹脂比為1: 40，樹脂柱徑高比為1: 9，分別用4倍柱體積水、4倍柱體積22%乙醇洗脫，除去雜質，再用6倍柱體積43%乙醇洗脫，HPLC檢測，收集含有丹酚酸A的43%乙醇洗脫部分，減壓回收乙醇并濃縮至無醇味；水溶液濃縮至每ml含IOmg丹酚酸A的溶液，通過ODS層析柱分離，丹酚酸A上樣量與葡聚糖凝膠LH-20比為1: 15，樹脂柱徑高比為1: 20，分別用4倍柱體積水、8倍柱體積30%乙醇溶液洗脫除雜，再用5倍柱體積60%乙醇溶液洗脫，收集含有丹酚酸A的60%乙醇溶液部分，減壓回收乙醇并濃縮至每Iml含丹酚酸A12mg水溶液；水溶液用10 %鹽酸調pH至2. 8，用5倍量的乙酸甲酯，分5次萃取，分離有機層，減壓回收乙酸甲酯，制成每Iml含丹酚酸AO. 5g的萃取液，加入3倍量硅膠，攪拌，揮干；把攪拌樣硅膠加到已裝好的12倍量干硅膠柱上，硅膠柱徑高比為1: 10，以正戊烷、乙酸甲酯為洗脫劑，梯度洗脫，分別用正戊烷-乙酸甲酯(4 6)洗脫6倍柱體積，正戊烷-乙酸甲酯(6 4)洗脫7倍柱體積，減壓回收洗脫劑，再加10倍量水溶解，真空干燥(干燥溫度600C，真空度-O. 07Mpa以上，功率15KW)干燥3. 5小時，得丹酚酸A。實施例7取丹參藥材，切成飲片，每次加9倍量90°C水溫浸提取3次，同時以25轉/分速度攪拌，每次溫浸提取3小時；提取液減壓濃縮至相對密度1. 12(60°C)，加入乙醇使含醇量在75%，靜置，濾過，濾液減壓回收乙醇并濃縮至無醇味；加水稀釋至每Iml含丹酚酸B20mg，水溶液用10%碳酸鈉調pH至5. 0，加入1. 0% ZnCl2作為催化劑，在135°C溫度加熱轉化4. 5小時，轉化液用15%硫酸調pH值至3. O,離心,上清液減壓濃縮至每Iml含丹酹酸A5mg,經AB-8大孔樹脂柱層析分離，丹酚酸A上樣量與大孔吸附樹脂比為1: 36，樹脂柱徑高比為1:9，分別用3倍柱體積水、4倍柱體積25%乙醇洗脫，除去雜質，再用5倍柱體積45%乙醇洗脫，HPLC檢測，收集含有丹酚酸A的45%乙醇洗脫部分，減壓回收乙醇并濃縮至無醇味；水溶液濃縮至每Iml含6mg丹酚酸A的溶液，通過聚酰胺層析柱分離，丹酚酸A上樣量與聚酰胺比為1: 10，樹脂柱徑高比為1: 10，分別用4倍柱體積水、8倍柱體積45%乙醇溶液洗脫除雜，再用8倍柱體積65%乙醇溶液洗脫，收集含有丹酚酸A的65%乙醇溶液部分，減壓回收乙醇并濃縮至每Iml含丹酚酸AlOmg水溶液；水溶液用15%硫酸調pH至2. 7，用4倍量的叔丁基甲基醚，分4次萃取，分離有機層，減壓回收叔丁基甲基醚，制成每Iml含丹酚酸AO. 6g的萃取液，加入3倍量硅膠，攪拌，揮干；把攪拌樣硅膠加到已裝好的10倍量干硅膠柱上，硅膠柱徑高比為1: 8，以正戊烷、乙酸乙酯為洗脫劑，梯度洗脫，分別用正戊烷-乙酸乙酯(4 6)洗脫8倍柱體積，正戊烷-乙酸乙酯(6 4)洗脫8倍柱體積，減壓回收洗脫劑，再加8倍量水溶解，用微波真空干燥(微波真空干燥溫度70°C，回差溫度4°C，真空度-O. 07Mpa以上，微波功率25KW) 110分鐘，得丹酚酸A。實施例8取丹參藥材，粉碎成直徑約2mm顆粒，每次加9倍量85°C水溫浸提取3次，同時以22轉/分速度攪拌，每次溫浸提取3小時；提取液減壓濃縮至相對密度1. 14(600C )，加入乙醇使含醇量在70%，靜置，濾過，濾液減壓回收乙醇并濃縮至無醇味；加水稀釋至每Iml含丹酚酸B25mg，水溶液用10 %檸檬酸鈉調pH至4. 2，加入O. 4% AlCl3作為催化劑，在133°C溫度加熱轉化4. 5小時，轉化液用10%鹽酸調pH值至2. 8，離心，上清液減壓濃縮至每Iml含丹酚酸A5mg，經HPD-300大孔樹脂柱層析分離，丹酚酸A上樣量與大孔吸附樹脂比為1: 45，樹脂柱徑高比為1: 10，分別用5倍柱體積水、6倍柱體積20%乙醇洗脫，除去雜質，再用5倍柱體積45%乙醇洗脫，HPLC檢測，收集含有丹酚酸A的45%乙醇洗脫部分 ，減壓回收乙醇并濃縮至無醇味；水溶液濃縮至每Iml含8mg丹酚酸A的溶液，通過聚酰胺層析柱分離，丹酚酸A上樣量與聚酰胺比為1: 12，樹脂柱徑高比為1: 8，分別用3倍柱體積水、6倍柱體積45%乙醇溶液洗脫除雜，再用8倍柱體積55%乙醇溶液洗脫，收集含有丹酚酸A的55%乙醇溶液部分，減壓回收乙醇并濃縮至每Iml含丹酚酸AlOmg水溶液；水溶液用15%鹽酸調pH至2. 9，用5倍量的叔丁基甲基醚，分5次萃取，分離有機層，減壓回收叔丁基甲基醚，制成每Iml含丹酚酸AO. 6g的萃取液，加入2. 5倍量硅膠，攪拌，揮干；把攪拌樣硅膠加到已裝好的12倍量干硅膠柱上，硅膠柱徑高比為1: 8，以正戊烷、叔丁基甲基醚為洗脫劑，梯度洗脫，分別用正戊烷-叔丁基甲基醚(4 6)洗脫8倍柱體積，正戊烷-叔丁基甲基醚(6 4)洗脫8倍柱體積，減壓回收洗脫劑，再加9倍量水溶解，用微波真空干燥(微波真空干燥溫度65°C，回差溫度5°C，真空度-O. 07Mpa以上，微波功率40KW) 120分鐘，得丹酚酸A。 實施例9取實施例3制成的丹酚酸A80g，加注射用水2800ml攪拌使溶解，用10%氫氧化鈉調pH值4. 5，加入甘露醇60g使溶解，再加入維生素CO. 5g,攪拌使溶解，混勻,加入活性炭2g攪拌吸附,濾過,除去活性炭；加注射用水至3000ml，檢測中間體含量，pH值，檢測合格后用O. 22 μ m微孔濾膜濾過，濾液灌裝于無菌的西林瓶中，部分塞上丁基橡膠塞，共制成1000瓶，裝盤，灌裝完成后，送入凍干機，關閉箱門，開啟凍干機，以20°C /h速度降溫至-40°C，保溫冷凍16小時；抽真空至O. 3mbar以下，在10小時內將凍結的丹酚酸A制劑溫度上升到-25 °C，維持-25 °C真空干燥8小時；繼續升溫，以O. 5°C /min均勻升溫至41°C，維持41°C干燥3小時后，將樣品溫度降至室溫，加蓋，即得丹酚酸A凍干粉針。實施例10取實施例4制成的丹酚酸A20g，加注射用水1900ml攪拌使溶解，用10%氫氧化鈉調pH值4. 8，加入甘露醇20g使溶解，再加入維生素CO. 8g,攪拌使溶解，混勻，加入活性炭O. 5g攪拌吸附，濾過，除去活性炭；加注射用水至2000ml，檢測中間體含量，pH值，檢測合格后用O. 22 μ m微孔濾膜濾過，濾液灌裝于無菌的西林瓶中，部分塞上丁基橡膠塞，共制成1000瓶，裝盤，灌裝完成后，送入凍干機，關閉箱門，開啟凍干機，以25 V /h速度降溫至_45°C，保溫冷凍15小時；抽真空至O. 3mbar以下，在12小時內將凍結的丹酚酸A制劑溫度上升到_25°C，維持_25°C真空干燥8小時；繼續升溫，以O. 8°C /min均勻升溫至40°C，維持40°C干燥3小時后，將樣品溫度降至室溫，加蓋，即得丹酚酸A凍干粉針。實施例11取實施例5制成的丹酚酸AlOg，加注射用水1500ml攪拌使溶解，用10 %氫氧化鈉調pH值4. 6，加入甘露醇20g使溶解，再加入維生素CO. 8g,攪拌使溶解，混勻，加入活性炭1. 2g攪拌吸附，濾過，除去活性炭；加注射用水至2000ml，檢測中間體含量，pH值，檢測合格后用O. 22 μ m微孔濾膜濾過，濾液灌裝于無菌的西林瓶中，部分塞上丁基橡膠塞，共制成1000瓶，裝盤，灌裝完成后，送入凍干機，關閉箱門，開啟凍干機，以25V /h速度降溫至_42°C，保溫冷凍12小時；抽真空至O. 3mbar以下，在13小時內將凍結的丹酚酸A制劑溫度上升到_23°C，維持_23°C真空干燥7小時；繼續升溫，以O. 8°C /min均勻升溫至42°C，維持42°C干燥4小時后，將樣品溫度降至室溫，加蓋，即得丹酚酸A凍干粉針。實施例12
取實施例6制成的丹酚酸A30g，加注射用水2000ml攪拌使溶解，用20%碳酸鈉調pH值4. 2，加入甘露醇20g、乳糖IOg使溶解，再加入硫脲O. 5g，攪拌使溶解，混勻，加入活性炭1. Og攪拌吸附，濾過，除去活性炭；加注射用水至2000ml，檢測中間體含量，pH值，檢測合格后用O. 22 μ m微孔濾膜濾過，濾液灌裝于無菌的西林瓶中，部分塞上丁基橡膠塞，共制成1000瓶，裝盤，灌裝完成后，送入凍干機，關閉箱門，開啟凍干機，以29°C /h速度降溫至-44°C，保溫冷凍14小時；抽真空至O. 3mbar以下，在11小時內將凍結的丹酚酸A制劑溫度上升到_26°C，維持_26°C真空干燥6. 5小時；繼續升溫，以O. 6°C /min均勻升溫至43°C，維持43°C干燥3. 5小時后，將樣品溫度降至室溫，加蓋，即得丹酚酸A凍干粉針。實施例13取實施例7制成的丹酚酸A35g，加注射用水2500ml攪拌使溶解，用10 %氫氧化鉀調pH值4. 5，加入葡萄糖30g使溶解，再加入亞硫酸氫鈉3g，攪拌使溶解，混勻，加入活性炭1. 5g攪拌吸附，濾過，除去活性炭；加注射用水至3000ml，檢測中間體含量，pH值，檢 測合格后用O. 22 μ m微孔濾膜濾過，濾液灌裝于無菌的西林瓶中，部分塞上丁基橡膠塞，共制成1000瓶，裝盤，灌裝完成后，送入凍干機，關閉箱門，開啟凍干機，以27V /h速度降溫至-43°C，保溫冷凍11小時；抽真空至O. 3mbar以下，在12. 5小時內將凍結的丹酚酸A制劑溫度上升到_24°C，維持_24°C真空干燥7. 5小時；繼續升溫，以O. 7°C /min均勻升溫至40°C，維持40°C干燥5小時后，將樣品溫度降至室溫，加蓋，即得丹酚酸A凍干粉針。實施例14取實施例8制成的丹酚酸A40g，加注射用水2700ml攪拌使溶解，用10%氫氧化鈉調pH值4. 3，加入葡萄糖20g、乳糖20g使溶解，再加入焦亞硫酸鈉4g，攪拌使溶解，混勻，加入活性炭1. 5g攪拌吸附，濾過，除去活性炭；加注射用水至3000ml，檢測中間體含量，pH值，檢測合格后用O. 22 μ m微孔濾膜濾過，濾液灌裝于無菌的西林瓶中，部分塞上丁基橡膠塞，共制成1000瓶，裝盤，灌裝完成后，送入凍干機，關閉箱門，開啟凍干機，以28°C /h速度降溫至-41 °C，保溫冷凍13小時；抽真空至O. 3mbar以下，在13. 5小時內將凍結的丹酚酸A制劑溫度上升到-25. 5°C，維持-25. 5°C真空干燥6. 5小時；繼續升溫，以O. 9V /min均勻升溫至44°C，維持44°C干燥3. 5小時后，將樣品溫度降至室溫，加蓋，即得丹酚酸A凍干粉針。實施例15取實施例1制成的丹酚酸A60g，加注射用水2700ml攪拌使溶解，用10 %氫氧化鈉調pH值4. O,加入甘露醇40g使溶解，再加入維生素C2g，攪拌使溶解，混勻，加入活性炭2g攪拌吸附，濾過，除去活性炭；加注射用水至3000ml，檢測中間體含量，pH值，檢測合格后用O. 22 μ m微孔濾膜濾過，濾液灌裝于無菌的西林瓶中，部分塞上丁基橡膠塞，共制成1000瓶，裝盤，灌裝完成后，送入凍干機，關閉箱門，開啟凍干機，以24. 5°C /h速度降溫至-42. 5°C，保溫冷凍11. 5小時；抽真空至O. 3mbar以下，在13. 5小時內將凍結的丹酚酸A制劑溫度上升到-24. 50C，維持-24. 5°C真空干燥6. 5小時；繼續升溫，以O. 55°C /min均勻升溫至42. 5°C，維持42. 5°C干燥2. 5小時后，將樣品溫度降至室溫，加蓋，即得丹酚酸A凍干粉針。實施例16取實施例2制成的丹酚酸A70g，加注射用水2800ml攪拌使溶解，用10 %氫氧化鈉調pH值5. O,加入甘露醇40g使溶解，再加入維生素C2g，攪拌使溶解，混勻，加入活性炭2g攪拌吸附，濾過，除去活性炭；加注射用水至3000ml，檢測中間體含量，pH值，檢測合格后用O. 22 μ m微孔濾膜濾過，濾液灌裝于無菌的西林瓶中，部分塞上丁基橡膠塞，共制成1000瓶，裝盤，灌裝完成后，送入凍干機，關閉箱門，開啟凍干機，以28. 5°C /h速度降溫至-44. 5°C，保溫冷凍11. 5小時；抽真空至O. 3mbar以下，在13. 5小時內將凍結的丹酚酸A制劑溫度上升到-24. 50C，維持-24. 5°C真空干燥6. 5小時；繼續升溫，以O. 75°C /min均勻升溫至43. 5°C，維持43. 5°C干燥3小時后，將樣品溫度降至室溫，加蓋，即得丹酚酸A凍干粉針。實驗例1:丹酚酸A、丹酚酸B分析方法研究1.儀器與試藥儀器Waters e2695高效液相色譜儀，Empower2色譜工作站,2998 二極管陣列檢測器；Sartorius cp225D十萬分之一電子天平。
·
色譜柱YMCC18 色譜柱(250 X 4. 6mm，5 μ m);試劑甲醇為色譜純，水為Millipore制備的超純水，其他試劑均為分析純。丹酚酸B對照品(批號111562-201009)均購自中國藥品生物制品檢定所，供含量測定用；丹酚酸A對照品為自制，經純度標化含量為99. 52%。2.對照品溶液及供試品溶液的制備2.1對照品溶液的制備分別精密稱取丹酚酸B、丹酚酸A對照品約10mg，置IOOml量瓶中，加甲醇溶解并稀釋至刻度，搖勻，作為對照品儲備溶液；再分別精密吸取上述各lml，置同一 IOml量瓶中，加甲醇稀釋至刻度，搖勻，作為混合對照品溶液。2. 3供試品溶液的制備精密稱取實施例1樣品(約相當于丹酚酸AlOmg)以及下述“實驗例2中1. 3丹酚酸B原料制備”獲得樣品(約相當于丹酚酸BlOmg)，置IOOml量瓶中，加甲醇溶解并稀釋至刻度，搖勻，即得。3.色譜條件與系統適用性試驗以十八烷基硅烷鍵合硅膠為填充劑；流速1. Oml/min ;檢測波長取混合對照品溶液，進行紫外掃描，結果在286nm波長處有最大吸收，故確定檢測波長為286nm ;柱溫30°C ；理論板數按丹酚酸A峰計算應不低于10000。0-10分鐘時，甲醇的比例由30%升至40%，O. 1-0. 5%磷酸水溶液的比例由70%降至60% ;10-30分鐘時，甲醇的比例由40%升至55%，0. 1_0. 5%磷酸水溶液的比例由50%降至45% ;30-60分鐘時，甲醇的比例由55%升至80%,O.1-O. 5%磷酸水溶液的比例由45%降至20%。在上述條件下，丹酚酸A、丹酚酸B對照品和丹參提取液、丹酚酸催化轉化液的色譜峰保留時間見表1，HPLC圖譜見圖1、圖2、圖3、圖4。表1.各對照品的色譜峰保留時間結果
W^-保留時間(min)丹酚酸 B21.76
_丹酚酸A_27.164、線性關系的考察
精密吸取上述混合對照品溶液O. lml、0.2ml、0.5ml、lml、2ml、5ml，分別置IOml量瓶中，加甲醇稀釋成以下濃度約為0. 00 lmg/ml > O. 002mg/ml、0. 005mg/ml、0. O lmg/ml >
0.02mg/ml、0. 05mg/ml的系列標準溶液。精密吸取上述標準溶液各10 μ I注入液相色譜儀，按“3.色譜條件與系統適用性試驗”項下色譜條件計算峰面積，分別以峰面積積分值為縱坐標，各濃度對照品進樣量為橫坐標，繪制標準曲線。結果表明混合對照品溶液在如下范圍內成良好的線性關系，見表2。表2.混合對照品溶液線性關系結果
權利要求
1.丹酚酸A凍干粉針用于制備保護缺血腦組織損傷藥物的用途，其中，所述丹酚酸A凍干粉針的重量配比為丹酚酸A20g 60g，填充劑20g 60g，抗氧劑為制成總量的0. 02% 0. 1% ； 所述丹酚酸A凍干粉針的制備方法為 (1)提取丹參用水或乙醇溶液提取得到水提取液或醇提取液； (2)轉化將步驟⑴得到的提取液，調pH至3.5 6.5，加摩爾百分比為0.1% 3.0%的催化劑，在100 140°C加熱I 6小時; (3)純化 a.將步驟(2)得到的溶液，調pH至2.5 4. 5，離心，上清液經非極性或弱極性大孔樹脂柱層析分離，用水洗脫后，用洗脫劑洗脫，高效液相檢測丹酚酸A，收集含有丹酚酸A的洗脫液； b.將步驟a得到的洗脫液用葡聚糖凝膠LH-20或ODS-C18或聚酰胺層析柱分離，用洗脫劑洗脫，高效液相檢測丹酚酸A，收集含有丹酚酸A的洗脫液； c.將步驟b得到的洗脫液調pH至2.0 4. 0，經有機溶劑萃取，分離有機溶劑相； d.將步驟c得到的溶液用硅膠層析柱分離，用洗脫劑洗脫，高效液相檢測丹酚酸A，收集含有丹酚酸A的洗脫液； (4)干燥將步驟d得到的洗脫液，減壓回收洗脫劑，再加水溶解，真空干燥、噴霧干燥或微波真空干燥，得所述丹酚酸A ; (5)取所述丹酚酸AlOg 80g加注射用水1500 2800ml攪拌使溶解，用堿調pH值4.0 5. 0，加入所述填充劑使其溶解，再加入所述抗氧劑，攪拌使溶解混勻，再加入活性炭0. 5 2g攪拌吸附，濾過除去活性炭，加注射用水后灌裝成瓶，送入凍干機中進行冷凍干燥； (6)所述冷凍干燥包括如下步驟 A、冷凍以20°C 30°C/h速度降溫至-40°C -45°C，保溫冷凍10 16小時； B、升華抽真空至0.3mbar以下，在10 14小時內將凍結的丹酚酸A制劑溫度上升到-23°C _27°C，維持-23°C -27°C真空干燥6 8小時； C、干燥繼續升溫，以0.5°C 1. (TC /min均勻升溫至40°C 45°C，維持40°C 45°C干燥2 5小時后，將樣品溫度降至室溫，加蓋，即得丹酚酸A凍干粉針。
2.根據權利要求1所述的用途，還包括保護血腦屏障的用途。
3.根據權利要求1所述的用途，還包括減少缺血腦組織梗死范圍的用途。
4.根據權利要求1所述的用途，還包括減輕缺血腦組織水腫的用途。
5.根據權利要求1 4任一項所述的用途，其重量配比為丹酚酸A20g 40g，填充劑20g 40g，抗氧劑為制成總量的0. 03% 0. 08%。
6.根據權利要求1 4任一項所述的用途，其中所述填充劑選自甘露醇、葡萄糖、乳糖中的任意一種或幾種，用量為20mg 40mg/2ml 3ml。
7.根據權利要求1 4任一項所述的用途，其中所述抗氧劑選自維生素C、硫脲、亞硫酸氫鈉、焦亞硫酸鈉中的任意一種或幾種。
8.根據權利要求7所述的用途，其重量配比為丹酚酸A20g，填充劑甘露醇20g，抗氧劑維生素CO. 8g ;其制備方法為取所述丹酚酸A20g，加注射用水1900ml攪拌使溶解，用氫氧化鈉鈉調pH值4. 0 5. 0，加入甘露醇20g使溶解，再加入0. 8g維生素C，攪拌使溶解混勻，加入活性炭0. 5g攪拌吸附，濾過除去活性炭；加注射用水至2000ml，灌裝成1000瓶，冷凍干燥； 所述冷凍干燥包括如下步驟 A、冷凍以25°C/h速度降溫至_45°C，保溫冷凍15小時； B、升華抽真空至0.3mbar以下，在12小時內將凍結的丹酚酸A制劑溫度上升到-25°C，維持-25°C真空干燥8小時； C、干燥繼續升溫，以0.8°C /min均勻升溫至40°C，維持40°C干燥3小時后，將樣品溫度降至室溫，加蓋，即得丹酚酸A凍干粉針。
9.根據權利要求1所述的用途，其中步驟(I)中所述的水提取方法為取丹參藥材，切成飲片或粉碎成直徑約2mm顆粒，每次加3 15倍量水提取，共提取I 3次，每次提取I 4小時；提取液減壓濃縮至相對密度1. 10 1. 25 (600C )，加入乙醇使含醇量在30% 80%，離心，上清液減壓回收乙醇并濃縮至無醇味，所述水提取采用煎煮提取或45 95°C水溫浸提取，同時以10 50轉/分速度攪拌，得丹參提取液。
10.根據權利要求1所述的用途，其中步驟(I)中所述的醇提取方法為取丹參藥材，切成飲片或粉碎成直徑約2mm顆粒，每次加3 15倍量30% 60%乙醇回流提取，每次提取I 4小時，共提取I 3次；減壓回收乙醇，得丹參提取液。
11.根據權利要求1所述的用途，其中步驟⑴中的提取液中丹酚酸B濃度為lmg/ml 30mg/ml或加水稀釋至lmg/ml 30mg/ml。
12.根據權利要求11所述的用途，其中提取液中丹酹酸B濃度為5mg/ml 20mg/ml或加水稀釋至5mg/ml 20mg/ml。
13.根據權利要求1所述的用途，其中步驟(2)中的催化劑是氯化鐵、三氯化釕、氯化鋁、氯化鋅、氯化鈀中的一種或幾種，催化劑與丹酚酸B的摩爾百分比為0. 1% 3. 0%。
14.根據權利要求13所述的用途，其中催化劑與丹酚酸B的摩爾百分比為0.5% 2.0%。
15.根據權利要求1所述的用途，其中步驟a中所述大孔樹脂柱為HPD-80、HPD-100,HPD-100B、HPD-200A、HPD-300、HPD-450、HPD-722、HPD-826、ADS-5、ADS-8、ADS-21、或 D101、AB-8 ;所述洗脫劑為水及不同比例的水與乙醇，并且先用水、10 40%乙醇洗脫，再用20 60%乙醇洗脫，高效液相檢測丹酚酸A，收集含有丹酚酸A部分，洗脫液濃縮至無醇味。
16.根據權利要求1所述的用途，其中步驟b中的所述洗脫劑為水及不同比例的水與乙醇，并且先用水、20 60%乙醇溶液洗脫除雜，再用40 90%乙醇溶液洗脫，高效液相檢測丹酚酸A，收集含有丹酚酸A部分，洗脫液濃縮至無醇味。
17.根據權利要求1所述的用途，其中步驟c中所述的有機溶劑為叔丁基甲基醚、乙酸甲酯、乙酸乙酯、乙酸丁酯或甲酸乙酯。
18.根據權利要求1所述的用途，其中步驟d中所述洗脫劑為石油醚、正戊烷、正庚烷、乙酸乙酯、乙酸甲酯、甲酸乙酯、叔丁基甲基醚組成的兩相溶劑。
19.根據權利要求1所述的用途，其中步驟⑷中所述微波真空干燥的溫度20-100°C，回差溫度1_5°C，真空度-0. 07Mpa以上，微波功率1-100KW，干燥10-200分鐘。
20.根據權利要求1所述的用途，其中步驟(4)中所述真空干燥的溫度50°C 90°C，真空度-0. 07Mpa以上，功率1 60KW，干燥2 20小時。
21.根據權利要求1所述的用途，其中步驟⑷中所述噴霧干燥的進風口溫度150°C 350°C，出風口溫度70°C 95°C，噴霧速度1 300ml/min。
22.根據權利要求1所述的用途，其中PH調節劑為磷酸、鹽酸、硫酸或醋酸。
全文摘要
本發明涉及一種丹酚酸A凍干粉針用于制備保護缺血腦組織損傷藥物的用途，其中，所述丹酚酸A凍干粉針的重量配比為丹酚酸A20g～60g，填充劑20g～60g，抗氧劑為制成總量的0.02％～0.1％。
文檔編號A61J3/02GK102988310SQ20121048892
公開日2013年3月27日 申請日期2012年11月20日 優先權日2012年11月20日
發明者楊小玲, 曾發林, 劉鵬, 羅恒真, 魏宇清, 李志勇 申請人:陸文萍