本發(fā)明克隆表達了一種L-α-羥酸氧化酶，并公開了其核苷酸序列和氨基酸序列及酶學性質(zhì)和應用，屬于工業(yè)微生物領(lǐng)域。

背景技術(shù)：

L-α-羥酸氧化酶(L-α-hydroxyacid oxidase)是一種以FMN(FAD)為輔酶的脫氫酶(Aliphatic l-α-hydroxyacid oxidase from rat livers purification and properties.Biochimica et Biophysica Acta(BBA)-Enzymology 1968,167:9-22)，通常包含有乙醇酸氧化酶(glycolate oxidase)(Preparation and some properties of crystalline glycolic acid oxidase of spinach.J.Biol.Chem.1958,231(1):135–57)、L-乳酸氧化酶(L-lactate oxidase)(Conversion of L-lactate oxidase to a long chain alpha-hydroxyacid oxidase by site-directed mutagenesis of alanine 95to glycine.J Biol Chem.1996 8；271(45):28300-28305)。可用于生物傳感器中測定乳酸的含量，或氧化L-乳酸生產(chǎn)丙酮酸。也有被用于光學純α-羥酸的制備(中國專利201210109290.4)

目前為止，已經(jīng)在惡臭假單胞菌(Pseudomonas putida)，綠色氣球菌(Aerococcus viridians)，鏈球菌屬(Streptococcus sp.)，片球菌屬(Pediococcus sp.)，乳酸乳球菌(Lactococus lactis)，遲鈍愛德華菌(Edwardsiella tarda)，恥垢分枝桿菌(Mycobacterium smegmatis),運動發(fā)酵單胞菌(Zymomonas mobilis)和過氧化醋桿菌(Acetobacter peroxidans)等細菌中克隆表達得到了L-乳酸氧化酶。L-乳酸氧化酶也在一些真菌中檢測到，例如白地霉(Geotrichum candidum)和解脂耶氏酵母(Yarrowia lipolytica)。(Search for Lactate Oxidase Producer Microorganisms，Applied Biochemistry and Microbiology,2007,43(2)178–181)

本發(fā)明首次從Kerstersia gyiorum DSM 16618中克隆表達出一種新型的L-α-羥酸氧化酶，該酶不僅可以氧化(S)-α-羥酸，而且可以氧化(S)-α-羥酸酯，可應用于光學純(R)-α-羥酸酯和(R)-α-羥酸的制備。

技術(shù)實現(xiàn)要素：

本發(fā)明從Morganella psychrotolerans中克隆得到了一種以FMN為輔酶的L-α-羥酸氧化酶的基因，利用大腸桿菌工程菌異源表達，公開了其相關(guān)的酶學特性，并進行了應用研究。

本發(fā)明的技術(shù)方案如下：

1、菌株

本發(fā)明L-α-羥酸氧化酶基因的來源菌株為：Morganella psychrotolerans DSM 17886，購自DSMZ-德國微生物菌種保藏中心。

2、L-α-羥酸氧化酶基因的克隆

提取Morganella psychrotolerans DSM 17886菌體基因組總DNA。設計特異性引物，應用PCR方法，擴增出L-α-羥酸氧化酶基因全長編碼框序列。并構(gòu)建重組質(zhì)粒。

3、L-α-羥酸氧化酶表達與純化

將重組質(zhì)粒導入E.coli BL21(DE3)中，誘導表達。菌體破碎后得到粗酶液，純化后冷凍干燥備用。

4、L-α-羥酸氧化酶的酶學性質(zhì)分析

以L-乳酸為底物研究pH對本發(fā)明所述L-α-羥酸氧化酶酶活的影響。

以L-乳酸為底物研究溫度對本發(fā)明所述L-α-羥酸氧化酶酶活的影響。

L-α-羥酸氧化酶的底物特異性分析：所用的底物有L-乳酸、乙醇酸、L-苯乳酸、L-酒石酸、L-蘋果酸、L-對羥基苯乳酸、L-丹參素、L-扁桃酸。

酶活測定方法為：根據(jù)Characterization of a Lactate Oxidase from a Strain of Gram Negative Bacterium from Soil，Applied Biochemistry and Biotechnology,56,1996,278-288。所述方法進行。

5、L-α-羥酸氧化酶拆分混旋的α-羥酸酯

拆分α-羥酸酯(alpha-hydroxy esters)的方法為：取純化好的酶0.1克于50mL三角瓶中，加入溶有α-羥酸酯5mM的pH 7的磷酸鹽緩沖液中，于30℃，150rpm水浴搖床中轉(zhuǎn)化16h，轉(zhuǎn)化后液相色譜分析上清液。(S)-α-羥酸酯中的α-羥基被脫氫氧化成對應的α-酮酸酯，(R)-α-羥酸酯不被氧化。

產(chǎn)物(R)-α-羥酸酯的光學純度通過對映體過量值(％e.e)來評價：

對映體過量值％e.e＝[(S_R-S_S)/(S_R+S_S)]×100％

(R)-α-羥酸酯得率(％)＝(S_R/S₀)×100％

式中S_S為反應后(S)-對映體的峰面積，S_R為反應后(R)-對映體的液相色譜峰面積，S₀為反應前(S)-和(R)-對映體的液相色譜峰面積之和。

產(chǎn)物測定液相色譜條件為：Chiralcel OD-H手性柱(4.6×250mm)，流動相體積比為正己烷：異丙醇：三氟乙酸＝80:20:0.1，流速為0.5mL/min，柱溫25℃，檢測波長210nm，進樣量20μL。

所述的α-羥酸酯為下列之一：丹參素冰片酯、丹參素異丙酯、苯乳酸冰片酯、苯乳酸異丙酯、對羥基苯乳酸冰片酯、對羥基苯乳酸異丙酯、扁桃酸冰片酯、扁桃酸異丙酯、丹參素細辛醇酯、乳酸冰片酯、苯乳酸細辛醇酯、對羥基苯乳酸細辛醇酯。

所述的α-羥酸酯，根據(jù)中國專利200610042787.3、201410180490.8、201410175950.8和20140699506.6公布的方法合成。

本發(fā)表明的有益之處：從Morganella psychrotolerans DSM 17886中克隆表達出一種新型的L-α-羥酸氧化酶，該酶可以氧化(S)-α-羥酸和(S)-α-羥酸酯，可用于規(guī)模化制備手性純(R)-α-羥酸酯，具有重要的工業(yè)應用價值。

具體實施方式

實施例1

本實施例為本發(fā)明所述L-α-羥酸氧化酶基因的克隆與大腸桿菌工程菌構(gòu)建。

1、Morganella psychrotolerans DSM 17886DNA的提取

將Morganella psychrotolerans DSM 17886菌株在LB培養(yǎng)基中培養(yǎng)12h，12,000rmp/min離心10min得到菌體，應用細菌基因組DNA抽提試劑盒(TaKaRa公司)按照其操作提取菌體基因組總DNA，放冰箱備用。

2、大腸桿菌感受態(tài)制備

(1)接種E.coli DH5α和BL21(DE3)分別于含有20mL LB培養(yǎng)基的250mL搖瓶中，37℃、200rpm/min培養(yǎng)過夜。

(2)按1％接種量接種于50mL LB培養(yǎng)基中，37℃培養(yǎng)至OD₆₀₀約0.6(約2～3h)。

(3)將菌液轉(zhuǎn)移到50mL預冷的離心管中，冰上放置30min，8000rpm/min、4℃離心5min。

(4)棄上清，加入5mL預冷的0.1mol/L CaCl₂溶液，使菌體懸浮，冰上放置20min，8000rpm/min、4℃離心5min。重復2次。

(5)棄上清，加入1.5mL預冷的0.1mol/L CaCl₂溶液(含15％甘油)，輕輕懸浮菌體，然后按每個離心管(1.5mL)加入100μL菌液分裝，-70℃冰箱保藏備用。

3、L-α-羥酸氧化酶基因的克隆

(1)引物設計

設計引物序列為：

引物1：5'AGCCGGGATCCTGAAAAGATCAAAAGCAGGTGTAT 3'

引物2：5'GCCGTCTAGACTGAAAATCACGATCGCTGTACA 3'

(2)PCR擴增

用以上合成的兩條引物，以Morganella psychrotolerans DSM 17886的基因組DNA為模板進行PCR擴增。

本步驟中擴增體系為：

擴增程序為：

98℃，10min

98℃，10sec；55℃，15sec；72℃，2min反應30個循環(huán)

72℃，10min

PCR產(chǎn)物送華大基因測序后得到該酶的基因序列，如SEQ ID NO:1所示。根據(jù)該基因序列得到的氨基酸序列如SEQ ID NO:2所示。

(3)雙酶切和連接

將pColdⅡ質(zhì)粒和PCR產(chǎn)物進行雙酶切，酶切體系為：10×cut buffer 3μl,DNA 4μl，酶BamHI和XbaI各0.5μl，無菌水2μl共30μl。37℃水浴下雙酶切1h。將DNA片段克隆到pColdⅡ載體上，并轉(zhuǎn)化到E.coli DH5α感受態(tài)細胞中。連接體系：10×DNA ligase buffer 2.5μl，DNA片段8μl，載體DNA 2μl，T4DNA ligase 1μl，無菌水11.5μl共25μl。16℃水浴下連接12h-16h。

(4)轉(zhuǎn)化

步驟：

1在連接體系中加入100μl DH5α感受態(tài)細菌，輕混勻，冰浴30min。

2放入預熱的42℃水浴中，放置90s進行熱休克處理。

3立即冰浴2min。

4加入1ml不含抗生素的LB培養(yǎng)液，37℃培養(yǎng)1h使菌體復蘇。

5將菌體均勻涂布在含抗生素的LB平板上。

6培養(yǎng)24h長勢良好。挑單菌落進行菌落PCR，核酸電泳驗證，提取重組質(zhì)粒。將重組質(zhì)粒導入BL21大腸桿菌感受態(tài)中，保存?zhèn)溆谩?/p>

實施例2

本實施例為本發(fā)明所述L-α-羥酸氧化酶的誘導表達及分離純化。

1、加500μl重組菌液到50ml LB培養(yǎng)液中。37℃培養(yǎng)2.5h，15℃下靜置0.5h。再加20μl 0.5M的IPTG，15℃下冷誘導培養(yǎng)24h。將發(fā)酵液進行離心(8000rmp/min，10min)得到菌體，用磷酸氫二鈉-磷酸二氫鈉緩沖溶液(20mmol/L，pH 7.0)復溶菌體，超聲破碎儀破碎，離心(8000rmp/min，10min)收集上清得到粗酶液。

2、將步驟1得到的粗酶液采用AKTA avant 150蛋白純化系統(tǒng)操作進行鎳柱純化，洗脫方法為：將A1、A2、B1、B2四根管路都放進水里，設置system flow 20ml/min流速，進行排氣。然后設置system flow 1ml/min、flow path(column position 3)、delta pressure 0.3、pre-pressure 0.5、Gradient 0、inset A1，待水滴均勻流出后裝柱子，平衡十分鐘之后把A1放進結(jié)合液中，B1放進洗脫液中，再進行排氣一次，平衡二十分鐘，然后上樣粗酶液，用500mM的高濃度咪唑緩沖液(B1所處溶液)梯度洗脫目的蛋白，將吸附在離子柱上的蛋白洗脫下來得到純化的酶。純化后的酶經(jīng)冷凍干燥備用。

實施例3

本實施例為本發(fā)明所述L-α-羥酸氧化酶的最適溫度。以L-乳酸為底物，將底物與pH為7.0的磷酸緩沖液在30-60℃不同的溫度條件下水浴15min，測定L-α-羥酸氧化酶的酶活，確定酶的最適反應溫度為30℃。

實施例4

本實施例為本發(fā)明所述L-α-羥酸氧化酶的最適pH值。以L-乳酸為底物，將底物在pH 3-9，30℃水浴15min測定酶的酶活，結(jié)果發(fā)現(xiàn)在pH 7.0條件下L-α-羥酸氧化酶酶活最高。

實施例5

本實施例為本發(fā)明所述L-α-羥酸氧化酶與不同底物的反應特性列于表2中。

表2 L-α-羥酸氧化酶對不同底物的活性

實施例6

根據(jù)發(fā)明內(nèi)容中的方法拆分各種外消旋α-羥酸酯，結(jié)果如下表所示：

表3拆分各種外消旋α-羥酸酯的效果

由上表可以看出，當在反應時間充分時，可以得到各類高光學純的(R)-α-羥酸酯，該酶的光學專一性非常好。

SEQUENCE LISTING

<110> 江南大學

<120> 一種氧化酶及其應用

<130> No

<160> 2

<170> PatentIn version 3.5

<210> 1

<211> 1203

<212> DNA

<213> Morganella psychrotolerans DSM 17886

<400> 1

atgaaaagat caaaagcagg tgtatttgcc gttgcggcat tggggctggc aatgacactg 60

agtaccgtgt atgcggcaga gtataaagcc agtaccaaag aagggccggt gaaaattgtt 120

aacctgaatg acctggaatc acaggtgaaa gccaatatgg ataaaggggc attcggttat 180

atccgcggtg gtgcggaaga tgaaaaaaat atgcgtgata ataccgccag ttttgatcgc 240

aaatatatta tgccgcgcgt gatgcaggga attgaattaa aggatatcga cctctcaacg 300

tcattcctgg gcatacctct ggcaacgcct gtcattcagg caccgatggc ggcacagggg 360

ctggcacacc gtgacgggga aattgccacg gcaaaaggta tggcaaaagc aggttctgtt 420

ttttctctca gcacctacgg aaataaaacc attgaggaag tggcggcggt atctgacgga 480

catccgttct tctttcagct ctatatgagc aaaaataatg cgtttaatga attcaccctg 540

aaacgggcga aagaaagtgg tgccaaagcg attattctga ccgtggattc tccggtcggc 600

ggctggcgtg aggatgattt acgcaacaat ttccagttcc cgttaggatt tgccaacctt 660

gaattgtttg ccgcacagaa caatgacggc tccaaaaccg ggaaaggcgc ggggatcagc 720

gagatctacg ctcaggccaa acaggcattt actccggatg atattcagta tgtgaaaaaa 780

ttatccggtc tgccggtcat tgtgaaaggt attcagtcac cggaagatgc tgaccgcgtc 840

attgaggcgg gtgcggatgc catctgggta tcaaaccacg gcggtcgtca gctggacagc 900

ggaccggcct cttttgatgt gctgccttcc attgcaaaag tggtgaacaa acgtgtgcca 960

atcgtgtttg acagtggtgt gcgccgtggt tcacacgtct ttaaagcgct ggcaagcggt 1020

gcggatgtgg ttgctgtcgg ccgtccggtt ctgtatggcc tgaatctggg cggggcggaa 1080

ggggtaaatt ctgttattca gcaactgaat aaagaattac gtatcaatat gatgctgggt 1140

ggtaccaaag atattaatgc cgtcaaacag accagactgt acagcgatcg tgattttcag 1200

taa 1203

<210> 2

<211> 400

<212> PRT

<213> Morganella psychrotolerans DSM 17886

<400> 2

Met Lys Arg Ser Lys Ala Gly Val Phe Ala Val Ala Ala Leu Gly Leu

1 5 10 15

Ala Met Thr Leu Ser Thr Val Tyr Ala Ala Glu Tyr Lys Ala Ser Thr

20 25 30

Lys Glu Gly Pro Val Lys Ile Val Asn Leu Asn Asp Leu Glu Ser Gln

35 40 45

Val Lys Ala Asn Met Asp Lys Gly Ala Phe Gly Tyr Ile Arg Gly Gly

50 55 60

Ala Glu Asp Glu Lys Asn Met Arg Asp Asn Thr Ala Ser Phe Asp Arg

65 70 75 80

Lys Tyr Ile Met Pro Arg Val Met Gln Gly Ile Glu Leu Lys Asp Ile

85 90 95

Asp Leu Ser Thr Ser Phe Leu Gly Ile Pro Leu Ala Thr Pro Val Ile

100 105 110

Gln Ala Pro Met Ala Ala Gln Gly Leu Ala His Arg Asp Gly Glu Ile

115 120 125

Ala Thr Ala Lys Gly Met Ala Lys Ala Gly Ser Val Phe Ser Leu Ser

130 135 140

Thr Tyr Gly Asn Lys Thr Ile Glu Glu Val Ala Ala Val Ser Asp Gly

145 150 155 160

His Pro Phe Phe Phe Gln Leu Tyr Met Ser Lys Asn Asn Ala Phe Asn

165 170 175

Glu Phe Thr Leu Lys Arg Ala Lys Glu Ser Gly Ala Lys Ala Ile Ile

180 185 190

Leu Thr Val Asp Ser Pro Val Gly Gly Trp Arg Glu Asp Asp Leu Arg

195 200 205

Asn Asn Phe Gln Phe Pro Leu Gly Phe Ala Asn Leu Glu Leu Phe Ala

210 215 220

Ala Gln Asn Asn Asp Gly Ser Lys Thr Gly Lys Gly Ala Gly Ile Ser

225 230 235 240

Glu Ile Tyr Ala Gln Ala Lys Gln Ala Phe Thr Pro Asp Asp Ile Gln

245 250 255

Tyr Val Lys Lys Leu Ser Gly Leu Pro Val Ile Val Lys Gly Ile Gln

260 265 270

Ser Pro Glu Asp Ala Asp Arg Val Ile Glu Ala Gly Ala Asp Ala Ile

275 280 285

Trp Val Ser Asn His Gly Gly Arg Gln Leu Asp Ser Gly Pro Ala Ser

290 295 300

Phe Asp Val Leu Pro Ser Ile Ala Lys Val Val Asn Lys Arg Val Pro

305 310 315 320

Ile Val Phe Asp Ser Gly Val Arg Arg Gly Ser His Val Phe Lys Ala

325 330 335

Leu Ala Ser Gly Ala Asp Val Val Ala Val Gly Arg Pro Val Leu Tyr

340 345 350

Gly Leu Asn Leu Gly Gly Ala Glu Gly Val Asn Ser Val Ile Gln Gln

355 360 365

Leu Asn Lys Glu Leu Arg Ile Asn Met Met Leu Gly Gly Thr Lys Asp

370 375 380

Ile Asn Ala Val Lys Gln Thr Arg Leu Tyr Ser Asp Arg Asp Phe Gln

385 390 395 400